고온, 알칼리성 Bacillus sp. F204의 CMCase 유전자를 pUC19의 HindIII부위에 연결하여 전이된 E.coli 형질전환체 중 2개의 재조합 플라스미드 즉, pBC191과 pBC192를 선발하였는데, 이들은4.6 Kb와 5.8 Kb HindIII 절편을 각각 함유하고 있었다. pBC191의 4.6 Kb HindIII 절편을 BamHI, EcoRI, KpnI, PvuII 부위가 각각 1개씩 존재하였다. Dioxigenin-labeled deoxyuridin-triphosphate에 4.6 Kb 절편을 표식한 것을 probe로 하여 상동성을 검정한 결과 모균주와 강한상동성이 없었고, 면역학적 실험에서도 Bacillus sp. F204 유래임이 인정되었다. pBC191의 4.6 Kb 절편을 E.coli의 발현 벡타인 pKK223-3과 Bacillus vector인 pGR71에 연결시켜 구축한 pKC231과 pGC711은 각각 pBC191에 비하여 효소활성이 3.2배와 2.8배정도 증가되었으며, 그리고 E.coli에서는 대부분 세포내와 periplasmic 분획에서 검출되었다. 기질 특이성을 조사한 결과에 의하면 pBC191과 pBC192는 CMCase gene을 코딩하고 있는 것으로 나타났다.
Cellulase genes from thermophilic alkalophilic Bacillus sp. F204 a potent cellulase complex-producing bacterium, were cloned in Escherichia coli with pUC 19. Plasmids pBC191 and pBC192, isolated from transformants forming yellow zone around colony on the LB agar plate containing 0.5% carboxymethyl cellulose and ampicillin, contained 4.6 Kb and 5.8 Kb HindIII fragments, respectively. The 4.6 Kb insert of pBC191 had single sites for BamHI EcoRI, KpnI and pvuII. DNA hybridization and immunodiffusion studies showed that pBC191-encoded cellulase gene was homologous with that of host strain. pKC231, constructed by inserting 4.6 Kb insert of pBC191 at the HindIII site of pKK223-3, E. coli expression vector, and pGC711, constructed by inserting 4.6 Kb insert of pBC191 at the HindIII site of pGR71, E. coli and B. subtilis shuttle vector, had 3.2 times and 2.8 times as much cellulase activity as pBC191, respectively. Substrate specificity analysis showed that cellulases cloned were CMCase.
